只需要提供给我们样本------固定----------包埋--------切片-------染色
原理
PAS染色又称过碘酸雪夫染色，糖原染色。一般用来显示糖元和其它多糖物质。 [1]
原理：过碘酸能使细胞内的多糖乙二醇基氧化成二醛，再与Schiff氏液的无色品红结合，红色，定位于胞浆上。
方法
固定液
Carnoy固定液： 纯酒精60 ml 冰醋酸10ml氯仿 30ml,也可以选用75%酒精。
液配制
1) 过碘酸酒清夜配法:
过碘酸(HIO4·2H2O) 0.4g 95%酒精 35ml M/5醋酸钠(2.72g+蒸馏水100ml) 5ml蒸馏水10ml。
保存于冰箱内，用棕色瓶，可用两周。
2)Schiff氏液:
0.5克碱性品红加入100毫升蒸馏水中，时时摇动三角瓶5分钟，使之充分溶解。冷却至50℃后过滤加入10毫升1N盐酸，冷却至25℃，加入0.5-1克偏重硫酸钠，在室温中至少静置24小时,然后密封冰箱保存。
3) Schiff氏酒精液配置 Schiff氏液 11.5ml 1N HCI 0.5ml 纯酒精 23ml
4) 亚硫酸水 1%偏重亚硫酸钠10ml 1N HCI 10ml 蒸馏水 180ml的树胶溶解。
5）哈瑞或迈耶苏木精
染色步骤
1. 石蜡切片脱蜡至水（细胞涂片，冰冻切片直接水洗）；
2. 蒸馏水洗；
3. 过碘酸酒清夜10min；
4. 自来水冲洗10min；
5. Schiff氏液10min；
6. 流水冲洗5min；
7.用哈瑞苏木精或迈耶苏木精染核3min(细胞核染色过深可用盐酸酒精分化）；
8. 流水冲洗5min；
9. 常规脱水、透明、封固。
结果
PAS阳性为红色，细胞核蓝色。
方法
1、将新鲜血片或骨髓片用95%乙醇固定10分钟；
2、10g/L过碘酸液作用20分钟；
3、DH2O洗涤几次，晾干；
4、Schiff染液，60分钟；
5、用自来水洗涤15分钟（细水长流冲洗）；
6、苏木素染液10分钟；
7、自来水冲洗15分钟，待干。
结果
阳性反应，胞浆呈红色，阴性反应，胞浆呈无色；在正常血片中RBC不染色；PLT染成深红色；中性粒细胞胞浆染成红色或深红色，有些细胞有阳性颗粒；单核细胞的胞浆染成淡红色，可含有细小或粗大阳性颗粒；少数淋巴细胞的胞浆内含有少许小的淡红色或红色颗粒；正常骨髓的幼稚细胞和有核RBC都不染色；巨核细胞的胞浆内呈弥散红色或深红色。巨核细胞的胞浆内呈弥散红色或深红色。
应用
随着医学实验技术的发展，糖原染色应用的范围更加广泛，如用以证明与鉴别细胞内空泡状的性质 ，心肌病变及其他心血管疾病的诊断 ，糖原累积病诊断和研究 ，糖尿病的诊断和研究 ，用于某些肿瘤的诊断等。除用于糖原的鉴定和黏液的显示外 ，还可以观察肾小球基底膜 、结肠杯状细胞 中性黏液物质 、阿米巴滋养体和霉菌的着色。临床诊断、分类和治疗提供 了重要的依据。 [1]